通常SDSーPAGE後、メンブレンフィルターに吸着させたタンパク質を特異抗体を用いて検出する方法である。ブロッティング方法として(1)水槽型、(2)セミドライ型があるが、ここでは操作が簡単で速いセミドライ型について述べる。検出方法としては、2次抗体の種類によって、(1)AP(アルカリフォスファターゼ)法、(2)HRP(Horse
Radish Peroxidase)法、(3)125I-Protein A法(抗体ではない、高感度)などがあるが、ここでは操作が簡単で基質の安全性の高いAP法について述べる。
A.泳動のすんだSDSーPAGEゲル
泳動時に Rainbow Marker (Amersham RPN756) 5μlを同時に流しておくとマーカーとして、またブロティング効率の推定のために便利。
myosin 200 KD blue phosphorylase b 92.5 KD brown BSA 69 KD red Ovalbumin 46 KD yellow carbonic anhydrase 30 KD orange trypsis inhibitor 21.5 KD green lysozyme 14.3 KD magenta
B.メンブレン 1.ニトロセルロース(Amersham Hybond C 0.45 μetc.)
操作が簡単でブロッキングも短くてよいが泳動しすぎる
危険がある。バックがきれい。
2.PVDFメンブレン(BIO-RAD etc)
主にシークエンス用、ブロッキングを長くする必要あり。 泳動しすぎる危険はない。バックの発色あり。
メタノール(数秒)、転写液(15分)にて湿しておく
必要がある。その後乾かしてはいけない。
ここでは1について述べる。
C.泳動液 100ml 10 x Tris-Glysin 10 ml (10x, 1l = 30 g Tris, 144 g Glysin) メタノール 20 ml 水 70 ml 10 % SDS 0.2 ml (混合後3分ソニケート、長くしすぎると塩が析出する)
D.ブロッキング液 (FCS 10-20%, BSA 1%, OVA 1%, or Skim Milk 0.5%)
Skim Milk が手軽で安い。ブロックエース(雪印製、大日本製薬)として市販。
E.TBS (20 mM Tris-HCl pH 8.0, 0.15 M NaCl)
F.T-TBS (TBS + 0.1 % Tween 20)
E、Fは洗浄瓶に入れておくと便利 (Stock: 20 x TBS, 10% Tween 20)
G.AP反応液(100 mM Tris-HCl pH 9.5, 5 mM MgCl2, 100 mM NaCl)
H.100 x AP基質液(a. NBT 50 mg/ml 70% dimethylformamide, b. BCIP
50 mg/ml dimethylformamide) 10 ml反応液にa液66μl,b液33μlを混ぜる。
(G、HはBIOーRADからKitとして販売されている。)
I.一次抗体液:Monoclonal Ab (1-5 μg/ml) Polyclonal Ab (100-1000 倍希釈)
titrationの必要あり。Monoclonal Abの場合 Culture Sup. をそのまま使用できることもある。希釈する場合はTBSBSA(1%)などで行う。NaN30.02%を入れておけば4℃保存で10回以上使用可能。
J.AP標識二次抗体液。抗マウスヒツジ抗体、抗ウサギヒツジ抗体など。
市販。500-3000倍希釈。TBSBSAやTBS+1/10ブロックエースで希釈。
K.Whatmann 3M paper
L.ブロティング装置
A.ブロティング
1)ゲルの大きさに切ったB、K(4枚)を用意し、ゲルとともにCにつけ3分振る。
2)図のように下から順番に気泡に注意しながらのせる。
3)最後に重い本(生化学辞典、シグマのカタログなどが重宝)を上におく。
4)200 mA(定電流)30-60分転写
(10%ポリアクリルアミドゲルの場合、目的タンパク質の分子量にもよる)
5)メンブレンをTBSで洗う。ゲルは確認のために染色する。
B.抗体による検出
以後の操作は室温でのshakerによる震盪である。
1)ブロッキング。D液,15分
2)TBS,5分2回
3)一次抗体,1-2時間。または4℃ over night。
4)TBST,5分。TBS,5分2回。(一次抗体は回収して再使用)
5)2次抗体,30分-1時間
6)TBST,5分。TBS,5分3回。
7)AP反応液に基質を加えメンブレンを浸す。
8)発色してきたら(5-15分)、水でよく洗い、ろ紙上で乾かす。
9)光を避けろ紙にはりサランラップでカバーして保存する。
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